有谁能介绍如何去？

土著菌要去哪采集我想利用土著菌养

土著菌就生活在我们周围的自然环境中，走进阔叶树林或竹林，在落叶且腐殖质多地方，扒开树叶或杂草就可以看到细丝壮白色菌落，这就是有益的土著微生物。 土著微生物是多种有益微生物的混合群，土著微生物按好嫌气性分有好气菌、嫌气菌；按菌种分有酵母菌、曲霉菌、放线菌、乳酸菌、芽孢菌等。 可以在不同的季节、不同的地点采集不同的菌种。采集到的原始菌种应放在室内阴凉、干燥处保存。 土著菌采集方法 ： 1、采集地方：可以在当地山上落叶聚集较多的山谷、树林中采集。 2、具体办法：把做的稍微有一点硬的大米饭(1kg～1．5kg)，装入用干净杉木板做的小木箱(25cm×20cm×10cm)约三分之一，大米饭上...全部

  土著菌就生活在我们周围的自然环境中，走进阔叶树林或竹林，在落叶且腐殖质多地方，扒开树叶或杂草就可以看到细丝壮白色菌落，这就是有益的土著微生物。 土著微生物是多种有益微生物的混合群，土著微生物按好嫌气性分有好气菌、嫌气菌；按菌种分有酵母菌、曲霉菌、放线菌、乳酸菌、芽孢菌等。
   可以在不同的季节、不同的地点采集不同的菌种。采集到的原始菌种应放在室内阴凉、干燥处保存。 土著菌采集方法 ： 1、采集地方：可以在当地山上落叶聚集较多的山谷、树林中采集。
   2、具体办法：把做的稍微有一点硬的大米饭(1kg～1．5kg)，装入用干净杉木板做的小木箱(25cm×20cm×10cm)约三分之一，大米饭上面盖上宣纸，封好口，将其埋在当地山上落叶聚集较多的山谷树林中。
  为防止野生动物糟蹋，木箱最好罩上铁丝网。夏季经三～五天，春秋经六～七天，周边的土著微生物潜入到米饭中，在米饭上形成白色菌落（放置时间稍长时会形成各种颜色菌落，虽然也能利用，但最好还是用白色菌落）。
   3、扩陪方法：土著菌采集成功后掺入原材料量1/3左右的红糖，将其混合均匀(数量按坛子容量的三分之一)，把变的稀软状态的米饭装入坛子里，盖上宣纸，用线绳系好口，放置在温度18℃左右地方。
  大约放置7天左右，就会变成浓稠液体状态，饭粒多少会有些残留，但不碍事。简单过滤后就是土着微生物菌种原液。 用的时候直接稀释后和EM菌种原液一起使用！ 以下步骤适用于菌种生产单位实验室！普通用户可以不做！ 4、提纯复壮： 有条件的可以在实验室进行 一般情况下，采来的样品可以直接进行分离，但是如果样品中我们所需要的菌类含量并不很多，而另一些微生物却大量存在。
  此时，为了容易分离到所需要的菌种，让无关的微生物至少是在数量上不要增加，即设法增加所要菌种的数量，以增加分离的几率。可以通过选择性的配制培养基（如营养成分、添加抑制剂等），选择一定的培养条件（如培养温度、培养基酸碱度等）来控制。
  具体方法是根据微生物利用碳源的特点，可选定糖、淀粉、纤维素，或者石油等，以其中的一种为唯一碳源，那么只有利用这一碳源的微生物才能大量正常生长，而其他微生物就可能死亡或淘汰。对G一菌有选择的培养基(如结晶紫营养培养基、红—紫胆汁琼脂、煌绿胆汁琼脂等)通常含有5%~10%的天然提取物。
  在分离细菌时，培养基中添加浓度一般为50μg／m1的抗真菌剂(如放线菌酮和制霉素)，可以抑制真菌的生长。在分离放线菌时，通常于培养基中加入1~5m1天然浸出汁(植物、岩石、有机混合腐质等的浸出汁) 作为最初分离的促进因子，由此可以分离出更多不同类型的放线菌类型；放线菌还可以十分有效地利用低浓度的底物和复杂底物(如几丁质)，因此，大多数放线菌的分离培养是在贫脊或复杂底物的琼脂平板上进行的，而不是在含丰富营养的生长培养基上分离的；在放线菌分离琼脂中通常加入抗真菌剂制霉菌素或放线菌酮，以抑制真菌的繁殖；此外，为了对某些特殊种类的放线菌进行富集和分离，可选择性地添加一些抗生素(如新生霉素)。
  在分离真菌时，利用低碳／氮比的培养基可使真菌生长菌落分散，利于计数、分离和签定；在分离培养基中加入一定的抗生素如氯霉素、四环素、卡那霉素、青霉素、链霉素等即可有效地抑制细菌生长及其菌落形成；抑制细菌的另外一些方法有：在使用平皿之前，将平皿先干燥3~4天；降低培养基的pH值或在无法降低pH时，加入1：30000玫瑰红。
  这样有利于下阶段的纯种分离。 通过增殖培养，样品中的微生物还是处于混杂生长状态。因此还必须分离，纯化。在这一步，增殖培养的选择性控制条件还应进一步应用，而且要控制得细一点，好一点。
  同时必须进行纯种分离，常用的分离方法有稀释分离法、划线分离法和组织分离法。稀释分离法的基本方法是将样品进行适当稀释，然后将稀释液涂布于培养基平板上进行培养，待长出独立的单个菌落，进行挑选分离。
  划线分离法要首先倒培养基平板，然后用接种针（接种环）挑取样品，在平板上划线。划线方法可用分步划线法或一次划线法，无论用哪种方法，基本原则是确保培养出单个菌落。组织分离法主要用于食用菌菌种或某些植物病原菌的分离。
  分离时，首先用10%漂白粉或0。1%升汞液对植物或器官组织进行表面消毒，用无菌水洗涤数次后，移植到培养皿中的培养基上，于适宜温度培养数天后，可见微生物向组织块周围扩展生长。经菌落特征和细胞特征观察确认后，即可由菌落边缘挑取部分菌种进行移接斜面培养。
   对于有些微生物如毛霉、根霉等在分离时，由于其菌丝的蔓延性，极易生长成片，很难挑取单菌落。常在培养基中添加0。1%的去氧胆酸钠或在察氏培养基中添加0。1%的山梨糖及0。01%的蔗糖，利于单菌落的分离。
   经过分离培养，在平板上出现很多单个菌落，通过菌落形态观察，选出所需菌落，然后取菌落的一半进行菌种鉴定，对于符合目的菌特性的菌落，可将之转移到试管斜面纯培养。这种从自然界中分离得到的纯种称为野生型菌株，它只是筛选的第一步，所得菌种是否具有生产上的实用价值，能否作为生产菌株，还必须采用与生产相近的培养基和培养条件，通过三角瓶的容量进行小型发酵试验，以求得适合于工业生产用菌种。
  这一步是采用与生产相近的培养基和培养条件，通过三角瓶的容量进行小型发酵试验，以求得适合于工业生产用菌种。如果此野生型菌株产量偏低，达不到工业生产的要求，可以留之作为菌种选育的出发菌株。 。
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